蠕虫扩展

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我非常喜欢在非传统(非大肠杆菌)模式生物中使用合成生物学,所以我对最近一篇关于扩展蠕虫遗传密码的新闻感到非常兴奋。 “蠕虫!?拥有非自然的基因!?”你问?是的,没错,(是的,这是一篇非常棒的论文),但实际上它可能比你想象的更简单,并不那么可怕。

蠕虫!?

大多数合成生物学发生在微生物中,除了去年的一些 iGEM 团队团队外,我没有听说过关于微小的线虫秀丽隐杆线虫的研究。秀丽隐杆线虫是分子生物学、遗传学和发育生物学的优秀模式生物。它们也很小(1 毫米长),易于在实验室中照顾,生长速度快,并且相对容易进行工程改造,根据一篇旧的评论,“它们尽可能地接近微生物。”事实上,正是这种与微生物的接近使其有可能扩展它们的遗传密码。


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扩展的遗传密码!?

DNA 中有 4 个碱基,它们构成 64 个三字母密码子,这些密码子映射到遗传密码中的 20 个氨基酸。为了不受到这个集合的限制,合成生物学家通过制造不同的 DNA 碱基、四字母密码子以及将非天然氨基酸掺入蛋白质中来扩展密码。到目前为止,所有这些项目更多地是关于理解生命化学,而不是关于制造新的生物行为。通过改变 DNA 碱基,我们可以更好地了解 DNA 如何在活细胞内复制和加工,并制造体外诊断工具(这是一个有趣评论的 PDF,其中包含一些这方面的研究)。同样,制造新的氨基酸可以用来创造新的化学工具,以研究蛋白质的功能,无论是在纯化的蛋白质中还是在活细胞内部。

在所有这些情况下,在完成创造新碱基或氨基酸的化学过程后,生物工程发生在基因表达机制的层面上。复制 DNA 的蛋白质必须发生突变以接受不同的碱基,核糖体必须进化以识别四碱基密码子,并且必须制造新的 tRNA 来附着新的氨基酸。通常,经过工程改造的 tRNA 不会将非天然氨基酸替换为天然氨基酸,而是在三个终止密码子(TAG、TAA 或 TGA)之一处添加非天然氨基酸,这些密码子会告诉核糖体它已到达蛋白质的末端。

与许多合成生物学思想一样,自然界首先出现了这种情况。导致核糖体“读取”并在三个终止密码子之一处掺入氨基酸的 tRNA 突变形成了一大类称为无义抑制子的突变,这些突变在分子生物学历史和遗传密码的解码中起着重要作用。当一些突变的细菌病毒被分离出来时,发现了这些突变,这些病毒只能感染某些突变的细菌菌株。这些病毒具有“无义突变”,该突变将终止密码子放在重要蛋白质的中间,从而阻止该蛋白质完全制造和发挥作用。当这些病毒感染在蛋白质中间插入氨基酸而不是停止的细菌菌株时,病毒突变被“抑制”,因为蛋白质可以被制成其完整长度。第一个以这种方式发现的终止密码子 TAG 被称为“琥珀”密码子,因为突变的病毒是由一位名叫哈里斯·伯恩斯坦的研究生分离出来的,他的姓在德语中意为“琥珀”。其他两个突变被命名为赭石(TAA)和蛋白石(TGA),以保持颜色主题。

具有扩展遗传密码的蠕虫!?

因此,添加一个掺入非天然氨基酸而不是终止密码子的 tRNA 本质上是引入了一个无义抑制子突变。在许多微生物中,琥珀抑制子突变以不同的效率水平(被替换的终止密码子的百分比)自然发生,并且它们的一些蛋白质略微延长后可以正常存活,从而相对容易地以这种方式扩展细菌和酵母的遗传密码。合成生物学家最近已将这些 tRNA 添加到培养的动物细胞中,但成功率和替换效率各不相同,但大多数动物都无法在如此剧烈的突变中存活下来。

然而,秀丽隐杆线虫不像大多数动物,它是唯一一种在种系中鉴定并引入琥珀抑制子的多细胞生物,抑制效率高达 30%。由于这一点以及可用的许多遗传工具,剑桥大学的塞巴斯蒂安·格里斯和杰森·钦能够将一种新的 tRNA 引入秀丽隐杆线虫,该 tRNA 可以在 TAG 密码子上掺入两种非天然氨基酸之一。为了测试这是否有效,他们设计了一个基因,该基因将两个荧光蛋白融合在一起,中间有一个终止密码子。如果没有它们的 tRNA,核糖体只会产生第一个荧光蛋白,蠕虫将是绿色的。当他们将 tRNA 添加到蠕虫中,并在蠕虫的食物中添加非天然氨基酸时,两个蛋白质都会被制造出来,蠕虫是绿色和红色的。

除了以如此一般的效率制造一种带斑点的红色蠕虫之外,这还能用于什么?纯化蛋白质中的非天然氨基酸可用于修饰蛋白质化学,以进行结构生物学和酶学研究,在活细胞内部可用于追踪蛋白质的移动和相互作用。在整个动物中,这些工具可用于查看蛋白质如何参与大脑的运作以及胚胎的发育。蠕虫已经被用于这些类型的研究,因为它们拥有微小但复杂的大脑,并且它们的每个近 1000 个细胞都已通过发育进行映射。这些不是完全非自然的蠕虫,它们是经过稍微修改的蠕虫,可以帮助我们更好地了解天然蠕虫的工作原理。

Christina Agapakis is a biologist, designer, and writer with an ecological and evolutionary approach to synthetic biology and biological engineering. Her PhD thesis projects at the Harvard Medical School include design of metabolic pathways in bacteria for hydrogen fuel production, personalized genetic engineering of plants, engineered photosynthetic endosymbiosis, and cheese smell-omics. With Oscillator and Icosahedron Labs she works towards envisioning the future of biological technologies and synthetic biology design.

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